viernes, 26 de febrero de 2016

PRÁCTICA 29: SEROLOGÍA. HEMOAGLUTINACIÓN INDIRECTA. TOXOPLASMOSIS.

  • OBJETIVOS:

Determinar cuantitativamente los anticuerpos séricos dirigidos contra Toxoplasma gondii por hemoaglutinación indirecta.

  • FUNDAMENTOS:

Se basa en el principio de hemoaglutinación indirecta. Esta técnica permite detectar ás IgG y las IgM anti-toxoplasmáticas. Es posible diferenciarlas tratando el suero con 2-mercaptoetanol el cual inhibe el poder aglutinante de las IgM.
La presencia de Ac anti-Toxoplasma Gondii séricos provoca una aglutinación de los hematíes sensibilizados que se traduce en un velo rojo/marrón que tapiza el pocillo. En ausencia de anticuerpos específicos, estos hematíes se sedimentan en el fondo del pocillo con un anillo.
Los hematíes no sensibilizados aseguran la especificidad de la reacción y permiten eliminar las interferencias debidas a las aglutininas naturales anti-ovino (heteroanticuerpos ).

  • MATERIAL:

- Micropipeta 50µl.
- Puntas de pipeta.
- Microplaca de fondo U.
- Tubo de ensayo.

  • REACTIVOS:

- Hematíes sensibilizados (Tapón rojo).
- Hematíes no sensibilizados (Tapón verde).
- Control positivo.
- Control negativo.
- Tampón fosfato pH 7,2.


  • MUESTRA:

- Suero.

  • PROCEDIMIENTO:

- Preparar una dilución madre de suero a analizar.
Distribuir en un tubo:
50µl de suero.
1950µl de tampón fosfato.
- Preparar batería de dilución, suero control, reactivo control, C+ y C- con las siguientes cantidades:



  •  RESULTADOS:

Cuando se ealiza la titulación del suero del paciente por aglutinación en ausencia de 2-ME y se informa un título, en realidad se está informando una actividad aglutinante que e sla suma de la actividad aglutinante de la IgM y de la IgG.
TÍTULO -> 1:80
Si siguiendo el protocolo provisto por el fabricante, se realiza la técnica en presencia de 2-ME se produce una reducción de la IgM. El título que se obtiene al realizar la técnica de aglutinación en presencia de 2-ME corresponderá exclusivammente a la actividad aglutinante de la IgG.
- Si disminuye el títilo al menos 2 diluciones -> mido Ig M
- Si disminuye -> mido Ig G 

FOTOGRAFÍAS: 







viernes, 19 de febrero de 2016

PRÁCTICA 28: OBSERVACIÓN DE HONGOS CON LACTOFENOL.

  • OBJETIVOS:

Visualización microscópica de hongos ambientales.

  • APARATAJE:

- Microscópio.

  • MATERIALES Y REACTIVOS:

- Celo.
- Tijeras.
- Portaobjetos.
- Pipeta Pasteur.
- Asa de siembra.
- Medio de cultivo con hongos ambientales.
- Azul de lactofenol.

  • PROCEDIMIENTO:

-> CON CELO:
- Cortar un trozo de celo y pasarlo cuidadosamente por la placa con hongos.
- Colocar una gota de lactofenol y adherir el trozo de celo mencionado anteriormente.
- Visualizar al microscópio.
-> SIN CELO:
- Colocar una gota de lactofenol en el porta y coger con ayuda de un asa de siembra una colonia de hongo y extendrla uniformemente.
- Colocar el cubre en la preparación.
- Visualizar al microscópio.

  • RESULTADOS:

  • FOTOGRAFÍAS:
-> CON CELO:






->SIN CELO:







PRÁCTICA 27: SIEMBRA CÁNDIDA MEDIO DE CULTIVO CROMOGÉNICO.

  • OBJETIVO:

Identificación de diferentes especies de cándidas en función de la coloración de las colonias.

  • MATERIALES:

- Asas de siembra.
- Mechero de alcohol.
- Inóculo de diferentes especies de cándidas (Albicams y Krusei).
- Medio cromogénico.

  • PROCEDIMEINTO:

- Realizar una siembra en el medio cromogénico por agotamiento de estrías a partir del inóculo.

  • RESULTADO:


  • FOTOGRAFÍAS:





PRÁCTICA 26: MICOCULTIVO.

  • OBJETIVOS:

Visualización microscópica de hongos.

  • MATERIALES:

- Medio Saboureaud.
- Placa sembrada con hongos.
- Asas de siembra estériles.
- Mechero de alcohol.
- Bisturí.
- Pinzas.
- Portaobjetos,
- Cubreobjetos.
- Placa de Petri.
- Agua destilada.
- Papel.

  • PROCEDIMIENTO:

- Realizar en el medio de saboureaud con ayuda de un bisturí un cuadrado (1,5x1,5 cm) y transpasar con ayuda de las pinzas el fragmento de dicho medio a un porta.
- Coger una colonia de la placa de hongos y sembrarla por los bordes del cuadrado depositado en el porta.
- Colocar el porta.
- Incubar en cámara húmeda 24h a 25ºC.
- Finalmente sembramos la colonia de hongo anterior también alrededor del cuadrado realizado en la placa que contiene medio saboureaud.
- Incubar dicho medio 24h a 25ºC.

  • RESULTADOS:
HONGO CRECIDO EN CÁMARA HÚMEDA:



HONGO CRECIDO EN PLACA:
  • FOTOGRAFÍAS:





















PRÁCTICA 25: OBSERVACIÓN DE PARÁSITOS.

                                                          Huevos Hymenolepis nana

                                                          Huevos Fasciola hepática

                                                           Fasciola hepática

                                                                     Tenia

                                                                     Ladilla